1、DNA回收率低

A、溶膠液用量過少

準確計算凝膠的重量，按比例加入溶膠液。

B、凝膠塊未*融化

加入溶膠液后，置于55℃~60℃進行水浴，如有必要加入更多量的溶膠液。

C、電泳緩沖液使用時間過長，不新鮮

換用新配制的電泳緩沖液。

D、片段過小，<200 bp

加入1倍體積的異丙醇。

E、片段>10kb

加入洗脫液后，將吸附柱置于60℃，溫育15分鐘后進行離心洗脫。

F、洗脫液使用不正確

洗脫液pH在7.0~8.5之間時洗脫效果，pH過高或者過低，都將顯著影響洗脫效率，請使用試劑盒配送的洗脫液進行洗脫（10 mM Tris-HCL，pH8.5），使用ddH2O洗脫時請保證pH值在此范圍內(nèi)。

G、洗脫液加入位置不正確

使用較小洗脫體積洗脫時，洗脫液應加在膜的*。

H、起始產(chǎn)物量低

若初始回收產(chǎn)物的量很低，應先富集，增大起始產(chǎn)物量。

2、未回收到DNA

DNA Wash Buffer中未加入乙醇

加入規(guī)定用量的無水乙醇，使用后旋緊瓶蓋，以防乙醇揮發(fā)

3、電泳時，樣品飄出點樣孔或后續(xù)酶反應實驗不理想

乙醇殘留：洗脫前，應確保乙醇已去除干凈，可再次離心，以*去除殘留的乙醇后在進行洗脫操作。

4、柱子堵塞

凝膠未*融化：加入溶膠液后，置于55℃~60℃進行水浴，待凝膠*融化，冷卻至室溫后再過柱。

原文地址:/biotech/exp/molbio/DNA/2011/o81463377.html