mFluor Violet 500琥珀酰亞胺酯染料是美國(guó)AAT Bioquest生產(chǎn)的mFluor系列熒光染料。AAT Bioquest的mFluor 染料專為針對(duì)多色流式細(xì)胞儀的應(yīng)用而開發(fā)。這些染料具有較大的斯托克斯位移，并且可以通過(guò)流式細(xì)胞儀的激光線（例如405 nm，488 nm和633 nm）很好地激發(fā)。 mFluor Violet 500染料的熒光激發(fā)和發(fā)射大值分別約為405 nm和?500 nm。這些光譜特性使其成為Pacific Green （ThermoFisher）和BD Horizon V500標(biāo)記染料的替代品。 mFluor Violet 500 SE相當(dāng)穩(wěn)定，對(duì)蛋白質(zhì)氨基具有良好的反應(yīng)性和選擇性。 mFluor Violet 500 SE提供了一種方便的工具，可通過(guò)紫外激發(fā)光激發(fā)標(biāo)記流式細(xì)胞儀應(yīng)用中的單克隆、多克隆抗體或其他蛋白質(zhì)（> 10 kDa）。在相同條件下，mFluor Violet 500染料綴合物比Pacific Green（ThermoFisher）和BD Horizon V500的相應(yīng)生物綴合物明顯更亮。百螢生物為您提供優(yōu)質(zhì)的mFluor Violet 500琥珀酰亞胺酯染料。

操作方法

注意：該標(biāo)記方案是針對(duì)山羊抗小鼠IgG與mFluor 500 SE的綴合物開發(fā)的。 您需根據(jù)您的實(shí)際情況而定。

1.準(zhǔn)備蛋白質(zhì)儲(chǔ)備溶液（溶液A）：

將100μL反應(yīng)緩沖液（如1 M碳酸鈉溶液或1 M磷酸鹽緩沖液，pH~9.0）與900μL目標(biāo)蛋白溶液（如抗體，蛋白質(zhì)濃度> 2 mg / ml）混合至100μL，以得到1 mL蛋白質(zhì)標(biāo)記原液。

注1：蛋白質(zhì)溶液（溶液A）的pH值應(yīng)為8.5±0.5。如果蛋白質(zhì)溶液的pH低于8.0，則使用1M碳s氫鈉溶液或1M pH 9.0磷酸鹽緩沖液將pH調(diào)節(jié)至8.0-9.0的范圍。

注2：蛋白質(zhì)應(yīng)溶解于pH7.2-7.4的1X磷酸鹽緩沖鹽水（PBS）中。如果蛋白質(zhì)溶解在Tris或甘an酸緩沖液中，則必須用pH7.2-7.4的1X PBS透析，以除去用于蛋白質(zhì)沉淀的游離胺或銨鹽（例如硫酸銨和乙酸銨）。

注3：不純的抗體、穩(wěn)定的牛血清蛋白（BSA）抗體或明膠不會(huì)被很好的標(biāo)記，疊d化鈉或硫柳汞的存在也可能干擾綴合反應(yīng)?？梢酝ㄟ^(guò)透析或旋轉(zhuǎn)柱除去疊d化鈉或硫柳汞，以獲得標(biāo)記結(jié)果。

注4：如果蛋白質(zhì)濃度低于2 mg / mL，則結(jié)合效率會(huì)顯著降低。為獲得標(biāo)記效率，建議蛋白質(zhì)濃度范圍為2-10 mg / mL。

2.準(zhǔn)備染料儲(chǔ)備溶液（溶液B）：

將無(wú)水DMSO加入到mFluor 染料SE小瓶中以制備10-20mM儲(chǔ)備溶液。 通過(guò)移液或渦旋混合均勻。

注意：在開始綴合前準(zhǔn)備染料儲(chǔ)備溶液（溶液B），及時(shí)使用。 染料儲(chǔ)備溶液的長(zhǎng)期儲(chǔ)存可降低染料活性。 溶液B可在冰箱中保存兩周，避光保存。 避免凍融循環(huán)。

3.確定z佳染料/蛋白質(zhì)比例（可選）：

注意：每種蛋白質(zhì)都需要不同的染料/蛋白質(zhì)比例，這也取決于染料的性質(zhì)。蛋白質(zhì)的過(guò)度標(biāo)記可能影響其結(jié)合親和力，而低染料/蛋白質(zhì)比率的蛋白質(zhì)綴合物會(huì)降低靈敏度。我們建議您通過(guò)使用連續(xù)不同量的標(biāo)記染料溶液重復(fù)步驟4和5來(lái)實(shí)驗(yàn)確定染料/蛋白質(zhì)比率。通常，對(duì)于大多數(shù)染料 - 蛋白質(zhì)綴合物，推薦使用4-6種染料/蛋白質(zhì)。

3.1使用10：1摩爾比的溶液B（染料）/溶液A（蛋白質(zhì)）作為起始點(diǎn)：將5μl染料儲(chǔ)備溶液（溶液B，假設(shè)染料儲(chǔ)備溶液為10 mM）加入到樣品瓶中。蛋白質(zhì)溶液（95μl溶液A）有效搖動(dòng)。假設(shè)蛋白質(zhì)濃度為10mg / mL并且蛋白質(zhì)的分子量為~200KD，蛋白質(zhì)的濃度為~0.05mM。

注意：蛋白質(zhì)溶液中DMSO的濃度應(yīng)<10％。

3.2運(yùn)行綴合反應(yīng)（參見下面的步驟4）。

3.3重復(fù)＃3.2，溶液B /溶液A的摩爾比為5：1;分別為15：1和20：1。

3.4使用預(yù)制的旋轉(zhuǎn)柱純化所需的綴合物。

3.5計(jì)算上述4種結(jié)合物的染料/蛋白質(zhì)比（DOS）。

3.6檢測(cè)上述4種結(jié)合物，確定的染料/蛋白質(zhì)比例，以擴(kuò)大標(biāo)記反應(yīng)。

4.運(yùn)行結(jié)合反應(yīng)：

4.1有效加入適量的染料儲(chǔ)備溶液（溶液B）到蛋白質(zhì)溶液（溶液A）的小瓶中晃動(dòng)。

注意：溶液B /溶液的摩爾比由步驟3.6確定。如果跳過(guò)步驟3，我們建議使用10：1溶液B（染料）/溶液A（蛋白質(zhì)）的摩爾比。

4.2繼續(xù)在室溫下旋轉(zhuǎn)或搖動(dòng)反應(yīng)混合物30-60分鐘。

5.純化綴合物

以下方案是使用Sephadex G-25柱純化染料 - 蛋白質(zhì)綴合物的實(shí)例。

5.1按照說(shuō)明書準(zhǔn)備Sephadex G-25色譜柱。

5.2將反應(yīng)混合物（直接從步驟4）加載到Sephadex G-25柱的頂部。

5.3樣品在頂部樹脂表面下方運(yùn)行時(shí)立即加入PBS（pH 7.2-7.4）。

5.4向所需樣品中加入更多PBS（pH 7.2-7.4）以完成色譜柱純化。

注1：立即使用時(shí)，染料 - 蛋白質(zhì)偶聯(lián)物需要用染色緩沖液稀釋，并等分多次使用。

注2：對(duì)于長(zhǎng)期儲(chǔ)存，染料 - 蛋白質(zhì)綴合物溶液需要濃縮或冷凍干燥。