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附錄B
五種致瀉大腸埃希氏菌PCR鑒定方法
B.1 試劑和材料
B.1.1 按照表B.1序列在基因合成公司合成引物。
B.1.2 1µL取菌環(huán)。
B.1.3 滅菌去離子水。
B.1.4 0.85%滅菌生理鹽水。
B.1.5 10 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L EDTA, pH8.0 TE溶液:量取1 mol/L Tris-HCl緩沖液(pH8.0)5 mL、0.5 mol/L EDTA溶液(pH8.0)1 mL于500 mL燒杯中。加入約400 mL去離子水均勻混合,將溶液定容至500 mL,121 ℃高壓滅菌15 min,室溫保存。
B.1.6 1.5 mL Eppendorf管,8聯(lián)排管和8聯(lián)排蓋(平蓋/凸蓋)。
B.1.7 10×PCR反應(yīng)緩沖液,含840 mmoL Tris-HCl (pH 8.5)和500 mmoL KCl。
B.1.8 25 mmol/L MgCl2。
B.1.9 2.5 mmol/L dNTPs:dATP、dTTP、dGTP、dCTP每種濃度為2.5 mmol/L。
B.1.10 5 U/µL Taq酶。
B.1.11 陽(yáng)性對(duì)照品:包含12對(duì)引物擴(kuò)增的目標(biāo)DNA序列或者含有目標(biāo)基因的標(biāo)準(zhǔn)菌株。
B.1.12 50×TAE電泳緩沖液:稱量242 g Tris-HCl 和 37.2 g Na2EDTA·2H2O于1 L燒杯中,加入約800mL去離子水,充分?jǐn)嚢杈鶆?;加?7.1 mL的冰乙酸,充分溶解;用NaOH調(diào)pH至8.3,加去離子水定容至1 L后,室溫保存。使用時(shí)稀釋50倍即為1×TAE電泳緩沖液。
B.1.13 瓊脂糖。
B.1.14 溴化乙錠(EB)或其他核酸染料。
B.1.15 6×上樣緩沖液。
B.1.16 分子量Marker:至少包含100bp、200bp、300bp、400bp、500bp、600bp、700bp、800bp、900bp、1000bp、1500bp條帶。
B.1.17 微量移液器及對(duì)應(yīng)吸頭:0.5µL~2µL,2µL ~20µL,20µL ~200µL,200µL~1000µL。
B.2 儀器和設(shè)備
B.2.1 低溫冷凍離心機(jī):控溫4℃~8℃,zui大轉(zhuǎn)速不小于13000 rpm。
B.2.2 PCR儀。
B.2.3 天平:感量0.01g。
B.2.4 核酸電泳儀,包括電源、電泳槽、制膠槽(長(zhǎng)度>10cm)和梳子。
B.2.5 凝膠成像系統(tǒng)或紫外成像儀。
B.2.6 微量加樣器:0.5µL~2µL,2µL~20µL,20µL~200µL,200µL~1000µL。
B.3 檢測(cè)步驟
B.3.1 DNA模板準(zhǔn)備
B.3.1.1 將平板或斜面上生長(zhǎng)的菌落懸浮于200 µL 0.85%滅菌生理鹽水中,充分打散形成菌懸液,13000 rpm離心3 min。
B.3.1.2 棄掉上清液,使用1 mL滅菌去離子水充分混勻菌體,于100 °C水浴或者金屬浴維持10 min。
B.3.1.3 冰浴冷卻后,13000 rpm離心3 min,收集上清液,用滅菌去離子水按1:10稀釋上清液,取2 µL作為PCR檢測(cè)的模板。
B.3.1.4 也可用*提取基因組DNA,按照*說(shuō)明書進(jìn)行操作;所有處理后的DNA模板在-20°C以下保存?zhèn)溆谩?/p>
B.3.2 PCR對(duì)照
每次PCR反應(yīng)使用EPEC、EIEC、ETEC、STEC/EHEC、EAEC標(biāo)準(zhǔn)菌株或陽(yáng)性對(duì)照品作為陽(yáng)性對(duì)照。同時(shí),使用大腸埃希氏菌ATCC 25922作為陰性對(duì)照,使用滅菌去離子水作為空白對(duì)照,控制PCR體系污染。
B.3.3 PCR反應(yīng)體系配制及擴(kuò)增
每個(gè)樣品初篩需配置12個(gè)PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系,對(duì)應(yīng)檢測(cè)12個(gè)目標(biāo)基因,具體操作如下:
B.3.3.1 使用TE溶液(pH8.0)將合成的引物干粉稀釋成100 µmol/L儲(chǔ)存液。
B.3.3.2 根據(jù)表B.1中每種目標(biāo)基因?qū)?yīng)PCR體系內(nèi)引物的終濃度,使用滅菌去離子水配制12種目標(biāo)基因擴(kuò)增所需的10×引物工作液(以u(píng)idA基因?yàn)槔?,如表B.2)。
表B.1 五種致瀉大腸埃希氏菌目標(biāo)基因引物序列及每個(gè)PCR體系內(nèi)的終濃度
引物名稱
引物序列c
終濃度n(µmol/L)
PCR產(chǎn)物長(zhǎng)度(bp)
uidA–F
5′-ATG CCA GTC CAG CGT TTT TGC-3′
0.2
1487
uidA–R
5′-AAA GTG TGG GTC AAT AAT CAG GAA GTG-3′
0.2
escV–F
5′-ATT CTG GCT CTC TTC TTC TTT ATG GCT G-3′
0.4
544
escV–R
5′-CGT CCC CTT TTA CAA ACT TCA TCG C-3′
0.4
eae-Fa
5′-ATT ACC ATC CAC ACA GAC GGT-3′
0.2
397
eae-Ra
5′-ACA GCG TGG TTG GAT CAA CCT-3′
0.2
bfpB–F
5′-GAC ACC TCA TTG CTG AAG TCG-3′
0.1
910
bfpB–R
5′-CCA GAA CAC CTC CGT TAT GC-3′
0.1
stx1–F
5′-CGA TGT TAC GGT TTG TTA CTG TGA CAG C-3′
0.2
244
stx1–R
5′-AAT GCC ACG CTT CCC AGA ATT G-3′
0.2
stx2–F
5′-GTT TTG ACC ATC TTC GTC TGA TTA TTG AG-3′
0.4
324
stx2–R
5′-AGC GTA AGG CTT CTG CTG TGA C-3′
0.4
lt–F
5′-GAA CAG GAG GTT TCT GCG TTA GGT G-3′
0.1
655
lt–R
5′-CTT TCA ATG GCT TTT TTT TGG GAG TC-3′
0.1
stp–F
5′-CCT CTT TTA GYC AGA CAR CTG AAT CAS TTG-3′
0.4
157
stp–R
5′-CAG GCA GGA TTA CAA CAA AGT TCA CAG-3′
0.4
sth–F
5′-TGT CTT TTT CAC CTT TCG CTC-3′
0.2
171
sth–R
5′-CGG TAC AAG CAG GAT TAC AAC AC-3′
0.2
invE–F
5′-CGA TAG ATG GCG AGA AAT TAT ATC CCG-3′
0.2
766
invE–R
5′-CGA TCA AGA ATC CCT AAC AGA AGA ATC AC-3′
0.2
ipaH-Fb
5′-TTG ACC GCC TTT CCG ATA CC-3′
0.1
647
ipaH-Rb
5′-ATC CGC ATC ACC GCT CAG AC-3′
0.1
aggR–F
5′-ACG CAG AGT TGC CTG ATA AAG-3′
0.2
400
aggR–R
5′-AAT ACA GAA TCG TCA GCA TCA GC-3′
0.2
pic–F
5′-AGC CGT TTC CGC AGA AGC C-3′
0.2
1111
pic–R
5′-AAA TGT CAG TGA ACC GAC GAT TGG-3′
0.2
astA–F
5′-TGC CAT CAA CAC AGT ATA TCC G-3′
0.4
102
astA–R
5′-ACG GCT TTG TAG TCC TTC CAT-3′
0.4
16S rDNA-F
5′-GGA GGC AGC AGT GGG AAT A-3′
0.25
1062
16S rDNA-R
5′-TGA CGG GCG GTG TGT ACA AG-3′
0.25
注: a:escV和eae基因選作其中一個(gè);b:invE和ipaH基因選作其中一個(gè);c:表中不同基因的引物序列可采用可靠性驗(yàn)證的其他序列代替。
表B.2 每種目標(biāo)基因擴(kuò)增所需10×引物工作液配制表
引物名稱
體積(µL)
100 µmol/L uidA–F
10×n
100 µmol/L uidA–R
10×n
滅菌去離子水
100 - 2×(10×n)
總體積
100
注: n:每條引物在反應(yīng)體系內(nèi)的終濃度(詳見(jiàn)表B.1)。
B.3.3.3 將10×引物工作液、10×PCR反應(yīng)緩沖液、25 mmol/L MgCl2、2.5 mmol/L dNTPs、滅菌去離子水從-20℃冰箱中取出,融化并平衡至室溫,使用前混勻;5 U/µL Taq酶在加樣前從-20℃冰箱中取出。
B.3.3.4 每個(gè)樣品按照表B.3的加液量配制12個(gè)25 µL反應(yīng)體系,分別使用12種目標(biāo)基因?qū)?yīng)10×引物工作液。
表B.3 五種致瀉大腸埃希氏菌目標(biāo)基因擴(kuò)增體系配制表
試劑名稱
加樣體積(µL)
滅菌去離子水
12.1
10×PCR 反應(yīng)緩沖液
2.5
25 mmol/L MgCl2
2.5
2.5 mmol/L dNTPs
3.0
10×引物工作液
2.5
5 U/µL Taq酶
0.4
DNA模板
2.0
總體積
25
B.3.3.5 按照如下反應(yīng)條件設(shè)置PCR儀:預(yù)變性94 ℃ 5 min;變性94 ℃ 30 s,復(fù)性63 ℃ 30 s,延伸72 ℃ 1.5 min,30個(gè)循環(huán);zui后72 ℃延伸5 min。
B.3.3.6 將配制完成的PCR反應(yīng)管放入PCR儀中,核查PCR反應(yīng)條件正確后,啟動(dòng)反應(yīng)程序。
B.3.4瓊脂糖凝膠電泳分析PCR產(chǎn)物
B.3.4.1 稱量4 g瓊脂糖粉,加入至200 mL的1×TAE電泳緩沖液中,充分混勻。使用微波爐反復(fù)加熱至沸騰,直到瓊脂糖粉*融化形成清亮透明的溶液。
B.3.4.2 待瓊脂糖溶液冷卻至60 ℃左右時(shí),加入溴化乙錠(EB)至終濃度為0.5 µg/mL,充分混勻后,輕輕倒入已放置好梳子的模具中,凝膠的長(zhǎng)度要大于10 cm,適宜厚度為3 mm~5 mm。檢查梳齒下或梳齒間有無(wú)氣泡,用一次性吸頭小心排掉瓊脂糖凝膠中的氣泡。
B.3.4.3 當(dāng)瓊脂糖凝膠*凝結(jié)硬化后,輕輕拔出梳子,小心將膠塊和膠床放入電泳槽中,樣品孔在陰。
B.3.4.4 向電泳槽中加入1×TAE電泳緩沖液,液面高于膠面1 mm~2 mm 。
B.3.4.5 將5 µL PCR產(chǎn)物與1 µL 6×上樣緩沖液混勻后,用微量移液器吸取混合液垂直伸入液面下膠孔中,小心上樣于孔中;陽(yáng)性對(duì)照的PCR反應(yīng)產(chǎn)物加入到zui后一個(gè)泳道;*個(gè)泳道中加入2 µL分子量Marker 。
B.3.4.6 接通電泳儀電源,根據(jù)公式:電壓=電泳槽正負(fù)極間的距離(cm)×5 V/cm計(jì)算并設(shè)定電泳儀電壓數(shù)值;啟動(dòng)電壓開(kāi)關(guān),電泳開(kāi)始以正負(fù)極鉑金絲出現(xiàn)氣泡為準(zhǔn)。
B.3.4.7 電泳30 min~45 min后,切斷電源。取出凝膠放入凝膠成像系統(tǒng)或紫外成像儀中觀察結(jié)果,拍照并記錄數(shù)據(jù)。
B.3.5 結(jié)果判定
B.3.5.1 電泳結(jié)果中空白對(duì)照無(wú)條帶出現(xiàn),陰性對(duì)照僅有uidA條帶擴(kuò)增,陽(yáng)性對(duì)照中出現(xiàn)所有目標(biāo)條帶,PCR檢測(cè)結(jié)果成立。
B.3.5.2 根據(jù)電泳圖中目標(biāo)條帶大小,判斷目標(biāo)條帶的種類,記錄每個(gè)泳道中目標(biāo)條帶的種類。
B.3.5.3 在表B.4中查找不同目標(biāo)條帶種類及組合所對(duì)應(yīng)的致瀉大腸埃希氏菌類別。
表B.5 五種致瀉大腸埃希氏菌目標(biāo)條帶與型別對(duì)照表
致病型別
目標(biāo)條帶的種類組合
EAEC
aggR(+)
uidAc(+/-)
EPEC
bfpB(+/-), escVa(+), stx1(-), stx2(-)
STEC/EHEC
escV a(+/-), stx1(+), stx2(-), bfpB(-)
escV a(+/-)stx1(-), stx2(+), bfpB(-)
escV a(+/-), stx1(+), stx2(+), bfpB(-)
ETEC
lt, stp, sth中一條或一條以上陽(yáng)性
EIEC
invEb(+)
注:a:在判定EPEC或SETC/EHEC時(shí),escV與eae基因等同效果;b:在判定EIEC時(shí),invE與iapH基因等同效果。c:uidA+:97%以上大腸埃希氏菌為陽(yáng)性。
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