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小麥萌發(fā)前后淀粉酶活力的測定

2014-7-4  閱讀(7856)

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小麥萌發(fā)前后淀粉酶活力的測定

一、目的

學習和掌握測定淀粉酶(包括α-淀粉酶和β-淀粉酶)活力的原理和方法。

二、原理

淀粉是植物zui主要的貯藏多糖,也是人和動物的重要食物和發(fā)酵工業(yè)的基本原料。淀粉經(jīng)淀粉酶作用后葡萄糖、麥芽糖等小分子物質(zhì)而被機體利用。淀粉酶主要包括α-淀粉酶和β-淀粉酶兩種。α-淀粉酶可隨機地作用于淀粉中的α-1,4-糖苷鍵,葡萄糖、麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原糖,同時使淀粉的粘度降低,因此又稱為液化酶。β-淀粉酶可從淀粉的非還原性末端進行水解,每次水解下一分子麥芽糖,又被稱為糖化酶。淀粉酶催化產(chǎn)生的這些還原糖能使3,5-二硝基水楊酸還原,棕紅色的3-氨基-5-硝基水楊酸,淀粉酶活力越高,這種棕紅色越深,其反應(yīng)如下:

淀粉酶活力的大小與產(chǎn)生的還原糖的量成正比。用標準濃度的麥芽糖溶液制作標準曲線,用比色法測定淀粉酶作用于淀粉后的還原糖的量,以單位重量樣品在一定時間內(nèi)的麥芽糖的量表示酶活力。

淀粉酶存在于幾乎所有植物中。萌發(fā)3-4天的小麥種子,淀粉酶活力zui強,其中主要是α-淀粉酶和β-淀粉酶。兩種淀粉酶特性不同,α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6以下迅速鈍化。β-淀粉酶不耐熱,在70℃15min鈍化。根據(jù)它們的這種特性,在測定活力時鈍化其中之一,就可測出另一種淀粉酶的活力。本實驗采用加熱的方法鈍化β-淀粉酶,測出α-淀粉酶的活力。在非鈍化條件下測定淀粉酶總活力(α-淀粉酶活力+β-淀粉酶活力),再減去α-淀粉酶的活力,就可求出β-淀粉酶的活力。

操作步驟

1.淀粉酶液的制備

稱取1g 25℃下萌發(fā)3天的小麥種子(芽長約1-1.5cm),置于研缽中,加入少量石英砂和2mL蒸餾水,研磨成勻漿后,將勻漿轉(zhuǎn)入離心管中,用6mL蒸餾水分次將殘渣洗入離心管。提取液在室溫下放置提取15~20min,每隔2分鐘攪動1次,使其充分提取。然后在3 000r/min轉(zhuǎn)速下離心10min,將上清液倒入50mL容量瓶中,加蒸餾水定容至刻度,搖勻,即為淀粉酶原液,用于淀粉酶活力的測定。吸取上述淀粉酶原液10mL,放入50mL容量瓶中,用蒸餾水定容至刻度,搖勻,即為淀粉酶稀釋液,用于淀粉酶總活力的測定。

取干燥種子或浸泡2.5小時后的小麥種子1g,進行淀粉酶的提取,提取方法同上。

2.麥芽糖標準曲線制作:取7支干凈的具塞刻度試管,編號,按表1加入試劑。

附 注

(1)樣品提取液的定容體積和酶液稀釋倍數(shù)可根據(jù)不同材料酶活性的大小而定。

(2)為了確保酶促反應(yīng)時間的準確性,在進行保溫這一步驟時,可以將各試管每隔一定時間依次放入恒溫水浴,準確記錄時間,到達5min時取出試管,立即加入3,5-二硝基水楊酸以終止酶反應(yīng),以便盡量減小因各試管保溫時間不同而引起的誤差。同時恒溫水浴溫度變化應(yīng)不超過±0.5℃。

(3)如果條件允許,各實驗小組可采用不同材料,例如萌發(fā)1d、2d、3d、4d的小麥種子,比較測定結(jié)果,以了解萌發(fā)過程中這兩種淀粉酶活性的變化。

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