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282次線粒體復合體Ⅴ試劑盒說明書 分光光度法 25 管/12 樣
正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義
線粒體復合體Ⅴ又稱F1F0-ATP合酶,廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞的線粒體中,
由F1和F0兩個亞單位組成。該酶利用呼吸鏈產(chǎn)生的質子電化學梯度催化ATP合成,也可逆過
程水解ATP。此外,復合體Ⅴ還存在于葉綠體、異養(yǎng)菌和光合細菌中。復合體Ⅴ是線粒體氧
化磷酸化和葉綠體光合磷酸化合成ATP的關鍵酶。
線粒體復合體Ⅴ試劑盒說明書 測定原理
復合體Ⅴ水解ATP產(chǎn)生 ADP和 Pi,通過測定 Pi增加速率來測定復合體Ⅴ活性。
需自備的儀器和用品
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸
餾水。
試劑的組成和配制
試劑一:25mL×1瓶,-20℃保存;
試劑二:25mL×1瓶,-20℃保存;
試劑三:1 mL×1瓶,-20℃保存;
試劑四:粉劑×1 支,-20℃保存;臨用前每支加入 1.3mL蒸餾水,充分溶解備用,用不完的
試劑仍-20℃保存;
試劑五:6mL×1 瓶,4℃保存;
試劑六:粉劑×1 瓶,4℃保存;臨用前加入 3mL蒸餾水,充分混勻;溶解后4℃保存一周;
試劑七:粉劑×1 瓶, 4℃保存;臨用前加入 10mL蒸餾水,充分混勻;溶解后4℃保存一周;
試劑八:粉劑×1 瓶, 4℃保存;臨用前加入 10mL蒸餾水,充分混勻;溶解后4℃保存一周;
試劑九:液體10mL×1 瓶,室溫保存。
線粒體復合體Ⅴ試劑盒說明書 定磷試劑的配制:按 H2O: 試劑七:試劑八:試劑九=2:1:1:1 的比例配制,配好的定磷試劑應
為淺黃色。若無色則試劑失效,若是藍色則為磷污染(請根據(jù)需要,用多少配多少) 。
注意:配試劑用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器,或者一次性塑料器皿,以避免磷污染。
樣本的前處理:
組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離:
① 準確稱取 0.1g組織或收集 500萬細菌或細胞,加入 1mL試劑一和 10uL 試劑三,用冰
浴勻漿器或研缽勻漿。
② 將勻漿 600g,4℃離心5min。
③ 棄沉淀,將上清液移至另一離心管中,11000g,4℃離心 10min。
④ 上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白,可用于測定從線粒體泄漏的復合體Ⅴ(此步可選
做) 。
⑤ 步驟④中的沉淀即為線粒體,加入 800uL試劑二和 8uL 試劑三,超聲波破碎(冰浴,
功率 20%或200W,超聲 3s,間隔 10秒,重復 30 次),用于復合體Ⅴ酶活性測定。
測定步驟
1、酶促反應
試劑名稱(μL) 對照管 測定管
試劑四 25 25
試劑五 100 100
樣本 125
混勻, 37℃(哺乳動物)或 25℃(其它物種)準確水浴 30min
試劑六 50 50
樣本 125
混勻,4000g,25℃離心10min,取上清液
2、定磷
上清液 170 170
定磷試劑 830 830
混勻,室溫靜置 10min左右,在 660nm處讀取 A測定管和 A對照管,計算 ΔA=A測定管-A
對照管。
復合體Ⅴ活性計算
標準條件下測定的回歸方程為 y = 1.274x + 0.004;x為標準品濃度(mmol/L),y為 A值。
1、組織中復合體Ⅴ活性的計算:
(1) 按樣本蛋白濃度計算
單位的定義:每 mg組織蛋白每分鐘產(chǎn)生1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。
復合體Ⅴ活性(nmol/min/mg prot)=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V反總×106
]÷(V樣×Cpr) ÷T
=62.8× (ΔA-0.004) ÷Cpr
此法需要自行測定樣本蛋白質濃度。
(2) 按樣本鮮重計算
單位的定義:每 g組織每分鐘產(chǎn)生 1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。
復合體Ⅴ活性(nmol/min /g 鮮重) =[(ΔA-0.004) ÷1.274×V反總×106
]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T
=50.7× (ΔA-0.004) ÷W
(3) 按細菌或細胞密度計算
單位的定義:每 1 萬個細菌或細胞每分鐘產(chǎn)生 1 nmol 無機磷定義為一個酶活性單位。
復合體Ⅴ活性(nmol/min /104
cell)=[(ΔA-0.004) ÷1.274×V 反總×106
]÷(500×V 樣÷V 樣總)
÷T=0.101× (ΔA-0.004)
V反總:反應體系總體積,3×10-4
L; V樣:加入樣本體積,0.125 mL;V樣總:加入提取
液體積,0.808 mL;T:反應時間,30 min;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,
g;500:細胞或細菌總數(shù),500萬。
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