小鼠脾臟DC是研究zui多的淋巴組織DC，其特征為組成性表達MHC-II類分子和CD11c。該細胞群可進一步分為三群：主要分布于邊緣區(qū)的CD4+CD8-CD11b+DC，主要分布于T細胞區(qū)的CD4-CD8+CD11b-DC和雙陰性DC----CD4-CD8+CD11b+。其中，CD8+DC表達CD1d和DEC-205。我們可以根據(jù)需要選擇不同的方法將脾臟DC分選出來。

(一)貼壁法

    小鼠脾臟DC在體外可黏附于玻璃或塑料表面，但培養(yǎng)18-24h后，其黏附能力喪失，借此可與巨噬細胞分離。該方法無需特殊試劑，不需要進行密度梯度離心，操作簡單、省時。但用此方法獲取的DC數(shù)量少，純度低，而且分離所得的DC處于不同的分化階段，無法滿足精細實驗的需要。

(二)磁珠分選法

    CD11c表達于所有已知小鼠DC表面，所以將包被了磁珠的CD11c抗體與小鼠淋巴組織或非淋巴組織懸液共孵育并置于磁場后，結(jié)合了CD11c抗體的細胞將留在分選柱中，脫離磁場后可分離得到CD11c陽性的DC。該方法簡單易行，若操作得當，細胞純度可以達到95%以上。但需購置相應分選設備及試劑，花費較高。

(三)流式細胞儀分選

    DC表面表達多種相對特異性的表面標志，可根據(jù)實驗需要，選用某些特定表面標志的單克隆熒光抗體作標記，明確目的細胞群，通過流式細胞儀做自動分選。

    該方法可以根據(jù)多個標記進行細胞分選，彌補了MACS分選的不足，而且分離得到的DC細胞純度更高。但是采用FCM分選目前存在的主要問題是DC的種類很多，發(fā)育的過程和表面特征標志目前尚未*清楚。因此，在做DC分離時，必須視標本來源及目的細胞選擇合適的單克隆抗體精選標記。另外，進行流式分選必須購置具有分選功能的流式細胞儀，價格昂貴，對操作人員的技術也有較高要求。