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技術(shù)文章

比色法實驗步驟

閱讀:239發(fā)布時間:2015-11-4

比色法實驗步驟,一、實驗前應(yīng)明確的問題
 
1.  選擇適當?shù)募毎臃N濃度。
 
一般情況下,96孔培養(yǎng)板的一內(nèi)貼壁細胞長滿時約有105個細胞。但由于不同細胞貼壁后面積差異很大,因此,在進行MTT試驗前,要進行預(yù)實驗檢測其貼壁率、倍增時間以及不同接種細胞數(shù)條件下的生長曲線,確定試驗中每孔的接種細胞數(shù)和培養(yǎng)時間,以保證培養(yǎng)終止致細胞過滿。這樣,才能保證MTT結(jié)晶形成酌量與細胞數(shù)呈的線性關(guān)系。否則細胞數(shù)太多敏感性降低,太少觀察不到差異。
 
2.  藥物濃度的設(shè)定。
 
一定要多看文獻,參考別人的結(jié)果再定個比較大的范圍先初篩。根據(jù)自己初篩的結(jié)果縮小濃度和時間范圍再細篩。切記!否則,可能你用的時間和濃度根本不是藥物的有效濃度和時間。
 
3.  時間點的設(shè)定。
 
在不同時間點的測定OD值,輸入excel表,zui后得到不同時間點的抑制率變化情況,畫出變化的曲線,曲線什么時候變得平坦了(到了平臺期)那個時間點應(yīng)該就是的時間點(因為這個時候的細胞增殖抑制表現(xiàn)的zui明顯)。
 
4.  培養(yǎng)時間。
 
200 ul的培養(yǎng)液對于10的4~5次方的增殖期細胞來說,很難維持68 h,如果營養(yǎng)不夠的話,細胞會由增殖期漸漸趨向G0期而趨于靜止,影響結(jié)果,我們是在48 h換液的。
 
5.  MTT法只能測定細胞相對數(shù)和相對活力,不能測定細胞數(shù)。
 
做MTT時,盡量無菌操作,因為細菌也可以導(dǎo)致MTT比色OD值的升高。
 
6.  理論未必都是對的。
 
要根據(jù)自己的實際情況調(diào)整。
 
7.  實驗時應(yīng)設(shè)置調(diào)零孔,對照孔,加藥孔。
 
調(diào)零孔加培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜。對照孔和加藥孔都要加細胞、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜,不同的是對照孔加溶解藥物的介質(zhì),而加藥組加入不同濃度的藥物。
 
8.  避免血清干擾。
 
用含15%胎牛血清培養(yǎng)液培養(yǎng)細胞時,高的血清物質(zhì)會影響試驗孔的光吸收值。由于試驗本底增加,會試驗敏感性。因此,一般選小于10%胎牛血清的培養(yǎng)液進行。在呈色后,盡量吸凈培養(yǎng)孔內(nèi)殘余培養(yǎng)液。
 
比色法實驗步驟二、實驗步驟
 
(一)貼壁細胞
 
1.  收集對數(shù)期細胞,調(diào)整細胞懸液濃度,每孔加入100 ul,鋪板使待測細胞調(diào)密度至1 000-10 000孔,(邊緣孔用無菌PBS填充)。
 
2.  5%CO2,37 ℃孵育,至細胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上,細胞貼壁后即可加藥,或兩小時,或半天時間,但我們常在前一天下午鋪板,次日上午加藥.一般5-7個梯度,每孔100 ul,設(shè)3-5個復(fù)孔.建議設(shè)5個,否則難以反應(yīng)真實情況。
 
3.  5%CO2,37 ℃孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。
 
4.  每孔加入20 ul MTT溶液(5 mg/ml,即0.5% MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4 h。若藥物與MTT能夠反應(yīng),可先離心后棄去培養(yǎng)液,小心用PBS沖2-3遍后,再加入含MTT的培養(yǎng)液。
 
5.  終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液。
 
6.  每孔加入150 ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10 min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD490 nm處測量各孔的吸光值。
 
7.  同時設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質(zhì)、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜)。
 
比色法實驗步驟(二)懸浮細胞
 
1.  收集對數(shù)期細胞,調(diào)節(jié)細胞懸液濃度1×106/ml,按次序?qū)ⅱ傺a足的1640(無血清)培養(yǎng)基40 ul ;②加Actinomycin D(有毒性)10 ul用培養(yǎng)液稀釋 (儲存液100 ug/ml,需預(yù)試尋找稀釋度,1:10-1:20);③需檢測物10 ul;④細胞懸液50 ul(即5×104cell/孔),共100 ul加入到96孔板(邊緣孔用無菌水填充)。每板設(shè)對照(加100 ul 1640)。
 
2.  置37 ℃,5%CO2孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。
 
3.  每孔加入10 ul MTT溶液(5 mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4 h。(懸浮細胞推薦使用WST-1,培養(yǎng)4 h后可跳過步驟4),直接酶聯(lián)免疫檢測儀OD570 nm(630 nm校準)測量各孔的吸光值)
 
4.  離心(1000轉(zhuǎn)x10 min),小心吸掉上清,每孔加入100 ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10 min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD570 nm(630 nm校準)測量各孔的吸光值。
 
5.  同時設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質(zhì)、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜),每組設(shè)定3復(fù)孔。


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