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Southern blot是分子雜交常用的技術(shù),對(duì)于小編來說這可是浩大的工程,合理有序的實(shí)驗(yàn)安排是非常有必要滴。否則,一不小心,幾天的心血的以下是搜集的有關(guān)Southern blot 實(shí)驗(yàn)安排,供參考。
Southern blot實(shí)驗(yàn)安排總結(jié)
Southern blot 實(shí)驗(yàn)安排
酶切及轉(zhuǎn)膜:
*天晚上:
酶切
第二天:
跑電泳,看酶切效果。50V,6小時(shí)。轉(zhuǎn)移。
同時(shí)準(zhǔn)備吸水紙、Watmamm 3mm的濾紙、尼龍膜、磁盤、玻璃板、
剪刀、鈍頭鑷子、鉛筆、小的飯盒
配置試劑:
20×SSC:
NaCl 175.3g
檸檬酸鈉 88.2g
溶于800ml水中,調(diào)PH值至7.0,定容至1L,滅菌。
20%SDS
在400ml中加入100gSDS,定容至500ml。
變性液緩沖液
0.4mol/L NaOH
將12.8g NaOH溶于水中,定容至800ml。
2×SSC
將10ml20×SSC溶于水中,定容至100ml。
0.5×SSC/0.5%SDS
2.5ml 20×SSC和2.5mlSDS溶于水中,定容至100ml。
1M phosphate Buffer PH6.8
1M Na2PO4(FW 142) 1M NaH2PO4(FW120)
稱:0.1L×1M×142=14.2g 0.15L×1M×120=18g
溶于水中,定容至100ml。 溶于水中,定容至150ml。
zui后按Na2PO4:NaH2PO4=46.3:53.7=92.6ml:107.4ml 配200ml
第三天:
將尼龍膜用2×SSC 將但潤洗,再用煮沸的0.5×SSC/0.5%SDS漂洗兩次至溴酚藍(lán)顏色消失。置于濕潤的濾紙上,結(jié)合有DNA的一面向上,微波爐內(nèi)烘烤至濾紙與膜自然分離(約2分鐘)。膜用保鮮膜包裹后存在4度待用。
雜交過程實(shí)驗(yàn)安排:
前一天領(lǐng)鑰匙,登記。
*天:
預(yù)雜交及雜交液:
(注:BSA要求新鮮配置,要先溶解后混合,不然很難溶解)
配50ml
1%BSA 0.5g(先加5mlddH2O溶解)
7%SDS 20%SDS17.5ml
0.5M Phosphate buffer 1M:25ml
1mM EDTA 0.5M:100μl
鮭魚精DNA 100μg/μl 10mg/ml:50μl
ddH2O溶解至45ml,與5ml 1%BSA混合,定容至50ml水中。
洗膜液I(磷酸系統(tǒng)) 100ml
BSA 0.5% 0.5g
EDTA 1mM 0.5M:200μl
NaHPO4(PH7.2) 40mM 1M:4ml
SDS 5% 20%:25ml
洗膜液II(磷酸系統(tǒng)) 100ml
EDTA 1mM 0.5M:200μl
NaHPO4(PH7.2) 40mM 1M:4ml
SDS 5% 20%:25ml
雜交:門卡、衛(wèi)生紙、濾膜(預(yù)先剪好)、鑰匙、同位素探測(cè)儀、報(bào)紙、剪刀、10小條封口膜、計(jì)時(shí)器、冰盒+冰、袖筒、垃圾袋、鑷子(已有)、手套、多個(gè)浮板
洗膜:X光片夾、保鮮膜
注意:封口膜一定要先撕好了。
浮板尺寸要合適。
1、預(yù)雜交:
取膜,結(jié)合有DNA的一面朝下,放于預(yù)熱的預(yù)雜交液中,65度4個(gè)小時(shí)。
2、探針標(biāo)記:
(1) 在0.5ml離心管中加入下列試劑,95℃加熱3分鐘,迅速置于冰中,放置5分鐘。
探針 8μl
Random Primer 2μl
dH2O 4μl
(2)加入10×Buffer,dNTPMixture 2.5μl,用于標(biāo)記的dCTP 5μl。
(3)加入1μl Exo-free Klenow Fragment,37℃反應(yīng)10分鐘。
(4)65℃加熱5分鐘使酶失活。
(5)95℃加熱3分鐘迅速置于冰中冷卻。
(6)取適量的反應(yīng)液直接作為探針使用。
3、雜交
將標(biāo)記好且已經(jīng)變性的探針加入雜交液中,65度雜交14~16小時(shí),間或搖動(dòng)一下。
4、洗膜:
雜交完后,分別用洗膜液I室溫下洗20分鐘,洗膜液II室溫下和65度各洗20分鐘。洗完后稍微干燥晾干雜交膜(不可*干燥),用保鮮膜包裹后通過放射性探測(cè)器測(cè)量雜交信號(hào)的強(qiáng)弱,放于X光片夾中。
5、壓片,洗片:
壓片1~2天,先顯后定。
蛋白SDS-PAGE電泳
原理:蛋白被變性和失去電荷后其遷移率只與蛋白分子量大小有關(guān)。
電泳儀:寧波新芝科器研究所MV-II型雙垂直擬電泳槽
試劑配制:
清洗玻璃板:先用蒸餾水沖洗,再用脫脂棉醮無水乙醇擦拭玻璃表面,晾干。
配置10%過硫酸銨溶液(APS):稱取0.1g過硫酸銨(Ammonium Persulfate),加水至1ml。
事先配好的各項(xiàng)母液:10%(w/v)SDS 溶液:稱取10克SDS,溶于100 ml蒸餾水,微熱使溶解。
1%(v/v)TEMED溶液:取1 ml的TEMED(即N,N,N‘,N’-四甲基乙二胺),稀 釋至100ml。儲(chǔ)存于深色瓶?jī)?nèi),4℃保存。
10%過硫酸銨:(NH4)2S2O8(簡(jiǎn)稱AP)1克溶于10 ml水,用前配制。
蛋白質(zhì)樣品處理液:(不連續(xù)系統(tǒng))
a. 先配制0.5 M pH 8.0 的Tris-HCl buffer:0.61g Tris溶于50 mlddH2O,用1M 鹽酸調(diào)pH。
b. 10% SDS溶液2 ml,
β-巰基乙醇 0.5 ml,
Sucrose 4 g,(or 甘油1 ml)
溴酚藍(lán) 2 mg,
0.05M Tris-HCl buffer, 加水至總體積 10 ml (1×)
電極緩沖液:含0.1% SDS的0.05 M Tris-0.384 M Gly buffer, pH 8.3
6.0 g Tris
28.8 g Gly
10% SDS 10 ml , 加水稀釋到1升
凝膠緩沖液:
a. 濃縮膠緩沖液:
0.5 M,pH 6.8 Tris-HCl buffer:
稱取6.0 g Tris,加入50 ml 水溶解,用1M鹽酸調(diào)pH,定容至100 ml。
b. 分離膠緩沖液:
1.5 M,pH8.8 Tris-HCl buffer:
稱取18.2 gTris,用少量水溶解,加入鹽酸25 ml,再用鹽酸調(diào)pH,加水定容100 ml。
凝膠儲(chǔ)備液:
a. 濃縮膠儲(chǔ)備液:
10%丙烯酰胺- 0.5%甲叉雙丙烯酰胺溶液:
10gAcr, 0.5g Bis, 溶于100ml水,濾去不溶物,儲(chǔ)存于深色瓶中。
b. 分離膠儲(chǔ)備液:
30%Acr–0.8%Bis溶液:
30g Acr , 0.8 g Bis, 溶于100ml水,過濾,儲(chǔ)于深色瓶?jī)?nèi)。
分離膠的配制:按下述配方配制15ml,灌注9ml為佳。
SDS-PAGE 不連續(xù)垂直平板電泳:
試劑: 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)Marker
10% (w/v)SDS 溶液
1% (v/v)TEMED溶液
10% 過硫酸銨
蛋白質(zhì)樣品處理液
電極緩沖液
凝膠緩沖液
凝膠儲(chǔ)備液
SDS-不連續(xù)系統(tǒng)分離膠和濃縮膠的配制:
試劑名稱 配制30 ml 不同濃度的分離膠所需的試劑量(ml) 配制10ml5%濃縮膠所需試劑(ml)
7%分離膠 10%分離膠 12%分離膠 15%分離膠 20%分離膠
分離膠儲(chǔ)備液 7 10 12 15 20
分離膠緩沖液 7.5 7.5 7.5 7.5 7.5
濃縮膠儲(chǔ)備液 5
濃縮膠緩沖液 2.5
10%SDS溶液 0.3 0.3 0.3 0.3 0.3 0.1
1%TEMED 2 2 2 2 2 0.8
蒸餾水 13 10 8 5 1.5
10%過硫酸銨 0.2 0.2 0.2 0.2 0.1 1. 在分離膠灌注后的界面上加約0.5ml正丁醇,形成界面即可。待分離膠聚合后用濾紙吸出正丁醇,用ddH2O沖洗分離膠面兩次。
2. 濃縮膠的配制:按上述配方配制5ml,灌注2~3ml即可。
3. 電極緩沖液的配制:(5X,200ml)28.8g *,6.04g Tris, 10ml 10%SDS,pH應(yīng)在8~9之間。
4. 染色液的配制:0.25%考馬斯亮藍(lán)R-250(COOMASSIE R250),50%甲醇,7%乙酸水溶液。
5. 上樣緩沖液:上樣緩沖液也可用以下配方:濃縮膠緩沖液1.0ml、甘油0.8ml、10%SDS1.6ml、2-ME0.4ml、0.025%(W/V)溴酚藍(lán)0.2ml、水4.0ml或濃縮膠緩沖液1.0ml、甘油0.8ml、10%SDS3.2ml、2-ME0.4ml、0.025%(W/V)溴酚藍(lán)0.2ml、水2.4ml。臨用前加入2% (2-ME, 2-Mercaptoethanol),Protein樣品與上樣緩沖液1:1混勻后100℃加熱3~5分鐘,降至室溫后高速離心3分鐘,取上清加樣。每孔點(diǎn)樣量以30ul為宜。
6. 電泳:1X電極緩沖液約400ml,電壓100V,電流處在20~40mA之間,約3~4小時(shí)后電泳完畢。
7. 將玻璃板撬開后染色2~3小時(shí),回收染色液。
8. 脫色或脫色3~4小時(shí),脫色液配方:7%乙酸,30%甲醇的水溶液。
9. 拍照處理或凝膠成象,記錄結(jié)果。
10. 干膠:脫色后的凝膠用30%甲醇、7%乙酸、2~5%甘油的水溶液振蕩處理1小時(shí),取兩張?jiān)谒薪葸^1分鐘的醋酸纖維膜平鋪于干膠器上,凝膠處于兩膜之間,用玻璃棒滾動(dòng)除去氣泡,壓上干膠框,四周夾上夾子,風(fēng)干或干燥箱干燥24小時(shí)以上。
細(xì)胞核大片段DNA的提取方法
準(zhǔn)備
1. 滅菌:3個(gè)500 ml燒杯,研缽,小鑰匙,5 ml離心管,10 ml 離心管,5 ml槍頭, 剪口1 ml 槍頭;
2. 酒精處理:100 ml離心管,小鐵鏟,模具;
3. 清洗尼龍膜:洗干凈SDS,小燒杯,玻璃棒;
4. 核分離緩沖液(NIB),裂解Buffer,TE預(yù)冷;
5. 液氮, 10g 以上材料, 冰。
具體操作:
1. 在液氮中將材料研磨成粉末,盡量磨碎;
2. 在燒杯中加入核分離Buffer,預(yù)冷,按10ml/g加入;
3. 將粉末加入燒杯中,用玻璃棒輕輕攪勻,分散成塊的粉末,冰上靜置10 min;
4. 將混合物在單層大孔徑尼龍膜上過濾:在液體濾過以后,帶手套將尼龍膜卷起輕輕擠壓,擠出殘留液體;
5. 液體在雙層尼龍膜上再過濾一次;
6. 加入1/20體積的核分離Buffer(含10% Triton),輕輕攪勻,靜置10 min:時(shí)間不能延長(zhǎng),Triton的量不能增加,否則易使核破裂;
7. 4000 rpm離心10 min,小心倒盡上清:上清中可能還帶有白色顆粒狀的懸浮物,這是Triton與蛋白的結(jié)合物;
8. 加入50 ml核分離Buffer,重新懸浮沉淀,4000 rpm離心10 min;
9. 加入50 ml NIB,懸浮沉淀, 4000 rpm 離心10 min;
10. 配制1-1.2%低熔點(diǎn)瓊脂糖(LMT agarose)
11. 盡量除去上清,將混合物置于42℃中平衡,在沉淀混合物中加入等體積的LMT agarose(65℃) 小心用剪口1 ml槍頭混勻,將混合物注入模具中(模具預(yù)冷),要快,否則會(huì)凝固于管中;
12. 配制裂解Buffer
13. 將包埋成塊推出,浸入裂解Buffer,置于50℃,24h后更換裂解Buffer,再置于50℃處理24h;
14.
100 ml:
1.TE(PH8.0)在冰上洗滌三次,每次20min;
2.含1 mM PMSF的50 ml TE(PH8.0)冰上洗滌1h
3.5 ml TE(PH8.0)存放于4℃
3
洗滌包埋塊:注意事項(xiàng):
1. 所有用具,器皿,溶液都要預(yù)冷;
2. 全部操作都要在冰上進(jìn)行,除包埋塊的澆注和核破裂的過程
3. 動(dòng)作一定要輕柔而快速。
核分離Buffer
終濃度 母液 100 ml 所用量
Tris—HCl(PH9.5) 10 mM 1M 1 ml
EDTA 10 mM 0.5M 2ml
KCl 100 mM 1M 10ul
Sucrose 0.5M 17.11g
Spermidine 亞精胺 4mM 0.2M 2ml
Spermine 精胺 1.0mM 0.1M 1ml
Mercapto-ethanol 巰基乙醇 100ul
Triton X-100 10ml裂解Buffer
終濃度 母液 10ml
Sarkosyl十二烷基肌氨酸鈉 1% 20% 0.5ml
EDTA(PH 8.0) 0.25M 0.5M 5ml
Proteinase K 0.2mg/ml 2mg1mmol/L苯甲基磺酰氟(PMSF)溶液
【配制方法】
用異丙醇溶解PMSF成1.74mg/ml(10mmol/L),分裝成小份貯存于-20℃。如有必要可配成濃度高達(dá)17.4mg/ml的貯存液(100mmol/L)。
【注意】
PMSF嚴(yán)重?fù)p害呼吸道粘膜、眼睛及皮膚,吸入、吞進(jìn)或通過皮膚吸收后有致命危險(xiǎn)。一旦眼睛或皮膚接觸了PMSF,應(yīng)立即用大量水沖洗之。凡被PMSF污染的衣物應(yīng)予丟棄。
PMSF在水溶液中不穩(wěn)定。應(yīng)在使用前從貯存液中現(xiàn)用現(xiàn)加于裂解緩沖液中。PMSF在水溶液中的活性喪失速率隨pH值的升高而加快,且25℃的失活速率高于4℃。pH值為8.0時(shí),20μmmol/l PMSF水溶液的半壽期大約為85min,這表明將PMSF溶液調(diào)節(jié)為堿性(pH>8.6)并在室溫放置數(shù)小時(shí)后,可安全地予以丟棄。
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