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上海友騰生物科技有限公司

核酸分析技術(shù)

時間:2014-3-13閱讀:667
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內(nèi)容:
一、核酸電泳
二、雜交技術(shù)
三、PCR技術(shù)
四、基因芯片

一、核 酸 電 泳

(一)DNA的凝膠電泳
凝膠電泳是分子克隆的中心技術(shù)之一。

1、瓊脂糖凝膠用于分離大于200~1000bp的片段;
操作簡單、快速,且分離范圍廣,分辨率高

2、聚丙烯酰胺凝膠用于分離5-500bp的片段;
效果好、分辨率*,相差1bp的DNA。片斷就能分開,能容納相對大量的DNA 
用于核苷酸多態(tài)性的分析

瓊脂糖凝膠電泳的基本過程
材料:電泳緩沖液(常用TAE或TBE)、電泳級瓊脂糖、溴化乙錠溶液(核酸顯示劑)、加樣緩沖液(保證核酸不在加樣孔中擴散和用于電泳時間的指示系統(tǒng))、水平凝膠電泳裝置及制膠系統(tǒng)、直流電源系統(tǒng)。 
基本過程:制膠→放入電泳槽中并加入電泳緩沖液→取出梳子→將適量的核酸樣品和上樣緩沖液混合并上樣于加樣孔中→一定電壓條件下電泳→合適的時間后停止電泳→取出凝膠進行溴化乙錠染色→凝膠成像系統(tǒng)紫外燈下觀察并照相保存結(jié)果。
注意:溴化乙錠具有致癌性,操作時要帶手套。不同濃度瓊脂糖的凝膠分離范圍

影響DNA在凝膠中遷移速率的因素
1 DNA分子的大小
2 構(gòu)象
3 凝膠濃度
4 電壓
5 緩沖液

特殊的凝膠電泳
倒轉(zhuǎn)電場凝膠電泳(FIGE):用于分離分子量10~2000kb的DNA分子;
鉗位均勻電場電泳(CHEF電泳):可分離大于107bp的DNA分子

(二)RNA 電 泳

基本過程同DNA電泳一樣,但應(yīng)明確一點的是,因為RNA分子對RNA酶的作用非常敏感,因此必須用對RNA酶有抑制作用DEPC水來配置所有溶液,所有與RNA接觸的儀器和裝置都要嚴格處理以盡量減少RNA酶對樣品的降解;另外,因為RNA分子有二、三級結(jié)構(gòu)可以影響其電泳結(jié)果,因此電泳時應(yīng)在變性劑存在下進行,常用的變性劑為甲醛和戊二醛。

二 核酸雜交技術(shù)

(一)Southern Blot

原理:將待檢測的DNA分子用/不用限制性內(nèi)切酶消化后,通過瓊脂糖凝膠電泳進行分離,繼而將其變性并按其在凝膠中的位置轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素薄膜或尼龍膜上,固定后再與同位素或其它標(biāo)記物標(biāo)記的DNA或RNA探針進行反應(yīng)。如果待檢物中含有與探針互補的序列,則二者通過堿基互補的原理進行結(jié)合,游離探針洗滌后用自顯影或其它合適的技術(shù)進行檢測,從而顯示出待檢的片段及其相對大小。

用途:檢測樣品中的DNA及其含量,了解基因的狀態(tài), 如是否有點突變、擴增重排等。

Southern Blot 操作步驟:

DNA →瓊脂糖電泳→印跡轉(zhuǎn)移→預(yù)雜交→雜交(變性探針)→洗膜→放射自顯影或顯色

(二)Northern Blot

原理:在變性條件下將待檢的RNA樣品進行瓊脂糖凝膠電泳,繼而按照同Southern Blot相同的原理進行轉(zhuǎn)膜和用探針進行雜交檢測。

用途:檢測樣品中是否含有基因的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物(mRNA)及其含量。

操作過程

mRNA提取→甲醛變性電泳→印跡轉(zhuǎn)移→預(yù)雜交

雜交(變性探針)→洗膜→放射自顯影或化學(xué)發(fā)光

(三)探針標(biāo)記技術(shù)

1、標(biāo)記物:放射性和非放射性兩種

放射性:

非放射性:*、地高辛素、熒光素

2、標(biāo)記方法

(1)切口平移法

(2)隨機引物法

(3)末端標(biāo)記法

(4)單鏈DNA探針標(biāo)記

(5)寡核苷酸探針標(biāo)記法

三 PCR技術(shù)

(一)PCR (Polymerase chain reaction) 是用一對寡聚DNA作為引物,通過加溫變性-退火-DNA合成這一周期的多次循環(huán),使目的DNA。片段得到擴增。由于這種擴增產(chǎn)物是以指數(shù)形式積累的,經(jīng)25-30個循環(huán)后,擴增倍數(shù)可達106。 
Dr. Karry Mullis 1985年發(fā)明,獲1993年度諾貝爾化學(xué)獎;

(二)基本要素

1、Taq DNA聚合酶:

水生棲熱菌(thermus aquaticus,Taq)的DNA聚合酶
①5’→3’DNA聚合酶活性;
②無3’→5’外切酶活性,

35輪0.25%錯配,與原始模板有差別;

zui適聚合酶 溫度72℃,選擇72℃延伸
半衰期:92.5℃ 130min 
95℃ 40min 
97.5℃ 5―6min
變性溫度:≤95℃使其在整個擴增循環(huán)中保持足夠活性

pfu DNA 聚合酶 耐熱
5’→3’DNA聚合酶活性
3’→5’外切酶活性
度:pfu %26gt;Taq
但pfu擴增效率通常比Taq酶略差

文獻報道:Taq+pfu 會起到較好效果

2、引物

人工合成短寡核苷酸20bp-25bp→Tm=55℃-60℃,
Tm值要相近,每條10-50pmol /100%26#61549;l 
◆設(shè)計原則:

(1)靠近5'上游Primer與雙鏈DNA正鏈相同
3'下游Primer與雙鏈DNA正鏈互補,與負鏈相同
正鏈5'――――― 3' ――上游Primer
――下游Primer 負鏈 3'――――― 5'
例如:
IL-3正鏈
5'GCTCCATGACCCAG----------- GCGATCTTTTGAGTCCAA 3'
負鏈3'CGCTAGAAAACTCAGGTT 5'
上游~: 與其相同
下游~: 先寫出相應(yīng)負鏈3'→5'然后倒過來5'→3'
所以負鏈Primer:5'-TTg gAC TCA AAA gAT CgC -3'

(2)Primer 本身不要出現(xiàn)內(nèi)部互補序列
形成loop環(huán),內(nèi)部二級結(jié)構(gòu)
如: GGGTCGATTCCTACCCATGC

(3)注意減少Primer間互補序列
導(dǎo)致2個Primer形成dimer 
一般不要超過3個互補bp
如:CCCATGC ATGGAGTC 
: : : : : : : :
GGGTCTA TCAGTAAGC

(4)Primer 5’未端可修飾、突變:
修飾
如:32P、*、熒光素,不影響其效果
突變:AGCTCCATGACCCAG 
5'CGCTCCATGACCCAG 3‘
注意:絕不可以在3'端進行上述改造
∵DNA聚合酶是5'→3'聚合,若3'端改造→不能互補→不能延伸

(5)primer 5’端增加堿基
①內(nèi)切酶識別點:
(G)GAATTC GCTCCATGACCCAG 
↑保護bp
對PCR產(chǎn)物cloning有很大好處
便于內(nèi)切酶消化,不同內(nèi)切酶需保護bP數(shù)量不同
EcoRI 1 BglII 2-3
XbaI 2-3 HindⅢ %26gt;3
BamHI 2-3 PstI %26gt;4
XhoI %26gt;4 NotI %26gt;10
如果所用保護bp數(shù)量不合適→影響內(nèi)切酶消化→影響下步克隆
∵未切開,連接不上
②ATG起始密碼
③TAA、TAG、TGA終止密碼
如:
可溶性受體的表達,無膜內(nèi)區(qū)、穿膜區(qū),只有膜外區(qū)。

3、模板:

可選:DNA
mRNA→逆轉(zhuǎn)錄→cDNA
DNA包括: 質(zhì)粒 噬菌體 染色體DNA
較小 較大 ①目的gene是單拷貝
變性較易 變性較難 ②非常大,變性難
模板用量
Plasmid:lng
Chromosome:300-500ng
注意:
防止交叉污染

4、dNTP:

四種脫氧核苷酸,基本原料
終濃度:50%26#61549;M 
注意:不穩(wěn)定,保存時間長會失效

5、Mg2+

TaqDNA聚合酶作用時需要Mg2+
不同的酶需不同Mg2+
Taq:較少,Mg2+ 對反應(yīng)影響很大,0.5-1.5mM終濃度
pfu:Mg2+ 2-3mM,dNTP、primer用量約增加一倍
外界影響:
EDTA鰲合Mg2+ ∴選較低濃度TE(10mM Tris,1mMEDTA);
DNA模板、引物和dNTP 的磷酸基團均可與Mg2+ 結(jié)合, 降低Mg2+有效濃度。 ∴如果擴增產(chǎn)物或效率不理想,要注意調(diào)整合適的Mg2+濃度

6、溫度和時間:

(1)變性溫度:94-95℃
Templete:GC比例高、長度很長,則變性T↑

(2)退火:溫度越高,擴增特異性越好
取決于Tm值:Tm↑退火T↑;
Tm↓退火T↓
若Tm較高,可使退火和延伸在同一溫度

(3)延伸:
%26#61603;500nt---1min %26#61502;500nt--3min
一般:40-60sec

(三)PCR技術(shù)的應(yīng)用

1、 基因檢測:

2、基因克隆化

3、DNA突變

4、DNA序列分析

四、基因芯片

(一)利用核酸雜交的原理,應(yīng)用于DNA、RNA的研究
基因芯片(Gene Chip)就是利用點樣機等機械裝置,在玻璃等支持物表面整齊地點上高密度的、成千上萬個“點”,每個“點”含有可與一種基因雜交的一條DNA探針。由于芯片上有序地排列著DNA探針,因此也被稱為微陣列(Microarray)。在芯片上滴加樣品后,在合適的條件下,樣品中含有的各種核酸片段(cDNA或cRNA)就與相應(yīng)的探針雜交。由于核酸片段上已標(biāo)記有熒光素,激發(fā)后產(chǎn)生的熒光強度就與樣品中所含有的相應(yīng)核酸片段的量成正比,也就代表該基因的表達量。經(jīng)激光共聚焦掃描儀等裝置掃描后,所獲得的信息經(jīng)軟件分析處理,即可獲得成千上萬種基因的表達情況。正因為這種特點,基因芯片技術(shù)已成為當(dāng)前生命科學(xué)研究的熱點之一。

操作流程

(1)探針的設(shè)計、合成與芯片的制作(商品化產(chǎn)品);

(2)靶基因樣品的制備;
靶基因的制備:RT-PCR (設(shè)實驗組和對照組)
標(biāo)記方法:分別進行熒光素標(biāo)記如:Cy3和Cy5

(3)生化雜交反應(yīng);與常規(guī)的分子雜交過程基本相似
封閉 預(yù)雜交 雜交 洗脫

(4)雜交信號的檢測與結(jié)果的分析
激光共聚焦熒光檢測系統(tǒng)收集熒光信號,計算機分析

(二)基因芯片的應(yīng)用

用于基因轉(zhuǎn)錄水平的檢測、基因組分析和后基因組研究

舉例:美國斯坦福大學(xué)Davis等用PCR法從外周血淋巴細胞cDNA文庫中得到了1046種cDNA。片段,制成芯片,然后與熱處理的T淋巴細胞和未處理的T細胞種提取的mRNA反轉(zhuǎn)錄出的單鏈cDNA。片段雜交,經(jīng)激光共聚焦掃描系統(tǒng)分析,共發(fā)現(xiàn)17個差異表達的基因,其中11個是被熱誘導(dǎo)的,6個是被熱抑制的。經(jīng)序列分析證實,其中3個是未報導(dǎo)的新基因。

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