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細胞培養(yǎng)常用設備及實驗技巧(二)

時間:2014-3-11閱讀:400
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細胞的復蘇 

細胞復蘇的原則——快速融化:必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。

具體操作 

一、實驗前準備:

1.將水浴鍋預熱至37℃。

2.用75%酒精擦拭紫外線照射30min的超凈工作臺臺面。

3.在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)瓶等等。

二、取出凍存管:

1.根據(jù)細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的編號。

2.從液氮罐中取出細胞盒,取出所需的細胞,同時核對管外的編號。

三、迅速解凍:

1.迅速將凍存管投入到已經(jīng)預熱的水浴鍋中迅速解凍,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化。

2.約1~2min后凍存管內液體*溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內。

四、平衡離心:

用架盤天平平衡后,放入離心機中3000r/min離心3min。

五、制備細胞懸液:

1.吸棄上清液。

2.向離心管內加入10ml培養(yǎng)液,吹打制成細胞懸液。

六、細胞計數(shù):

細胞濃度以5×105/ml為宜。

七、培養(yǎng)細胞 

將復合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內,將培養(yǎng)瓶放入37℃和5%CO2的培養(yǎng)箱內2~4小時(或者24~48小時)后換液繼續(xù)培養(yǎng)培養(yǎng),換液的時間由細胞情況而定。

初學者易犯錯誤:

1.水浴鍋未預熱或者未預熱到37℃。

2.水浴鍋內凍存管太多,導致傳熱不佳,使融化時間延長。

3.離心前忘記平衡,導致離心機損壞和細胞丟失。

4.一次復蘇細胞過多,忘記更換吸頭和吸管,導致細胞交叉污染。

細胞計數(shù) 

實驗原理:當待測細胞懸液中細胞均勻分布時,通過測定一定體積懸液中的細胞的數(shù)目,即可換算出每毫升細胞懸液中細胞的細胞數(shù)目。

具體操作:

一、準備工作:

取一瓶傳代的細胞,按照《傳代細胞培養(yǎng)(消化法)》中的傳代方法繁殖細胞,待長成單層后以被使用。

二、細胞懸液制備:

細胞懸液的制備方法是用0.25%的*液消化、PBS液洗滌后,加入培養(yǎng)液(或Hanks液或PBS等*),吹打制成待測細胞懸液。

三、細胞計數(shù):

1.蓋好蓋玻片:取一套血球計數(shù)板,將特制的蓋玻片蓋在血球計數(shù)槽上。

2.制備計數(shù)用的細胞懸液:用吸管吸5滴細胞懸液到一離心管中,加入5滴臺盼藍染液(0.4%)或苯胺黑,活細胞不會被染色,加入染液后就可以在顯微鏡下區(qū)別活細胞和死細胞。

3.將細胞懸液滴入計數(shù)板:將待測細胞懸液吹均勻,然后吸取少量懸液沿蓋片邊緣緩緩滴入,要保證蓋片下充滿懸液,注意蓋片下不要有氣泡,也不能讓懸液流入旁邊槽中。

4.統(tǒng)計四個大格的細胞數(shù):將血球計數(shù)板放于顯微鏡的低倍鏡下觀察,并移動計數(shù)板,當看到鏡中出現(xiàn)計數(shù)方格后,數(shù)出四角的四個大鉻(每個大格含有16個中鉻)中沒有被染液染上色的細胞數(shù)目。

5.計算原細胞懸液的細胞數(shù):按照下面公式計算細胞密度:

(細胞懸液的細胞數(shù))/ml=(四個大格子細胞數(shù)/4)×2×10

說明:公式中除以4因為計數(shù)了4個大格的細胞數(shù)。

公式中乘以2因為細胞懸液于染液是1:1稀釋。 

公式中乘以104因為計數(shù)板中每一個大格的體積為:

1.0mm(長)×1.0mm(寬)×0.1mm(高)=0.1mm3,而1ml=1000mm3

四、細胞計數(shù)要點:

1.進行細胞計數(shù)時,要求懸液中細胞數(shù)目不低于104個/ml,如果細胞數(shù)目很少要進行離心再懸浮于少量培養(yǎng)液中。

2.要求細胞懸液中的細胞分散良好,否則影響計數(shù)準確性。

3.取樣計數(shù)前,應充分混勻細胞懸液,尤其時多次取樣計數(shù)時更要注意每次取樣都要混勻,以求計數(shù)準確。

4. 數(shù)細胞的原則是只數(shù)完整的細胞,若細胞聚集成團時,只按照一個細胞計算。如果細胞壓在格線上時,則只計上線,不計下線,只計右線,不計左線。

5. 操作時,注意蓋片下不能有氣泡,也不能讓懸液流入旁邊槽中,否則要重新計數(shù)。

五、初學者易犯的錯誤:

1. 計數(shù)前未將待測懸液吹打均勻。

2. 滴入細胞懸液時蓋玻片下出現(xiàn)氣泡。

3. 滴入懸液時的量太多,至使細胞懸液流入旁邊的槽中。

六、本實驗特殊試劑的配制:

4%臺盼藍母液:稱取4克臺盼藍,加入少量蒸餾水研磨,加雙蒸水至100毫升,用濾紙過濾,4℃保存。

使用液:使用時,用PBS稀釋母液至0.4%即可。

細胞的凍存 

1.先將凍存管放入4℃冰箱,約40min。

2.接著置于-20℃冰箱,約30~60min。

3.置于-80℃超低溫冰箱中放置過夜。

4.置于液氮罐中長期保存。

5同時做好凍存記錄,在自己的筆記本和凍存記錄本上均要記錄。

注意事項:

1.使用DMSO前,不需要進行高壓滅菌,它本身就有滅菌的作用。高壓滅菌反而會破壞它的分子結構,以至于降低冷凍保護效果。在常溫下,DMSO對人體有害,故在配制時戴上手套操作。 

2.不宜將凍存細胞放置在0℃~-60℃這一溫度范圍內過久,低溫損傷主要發(fā)生在這一溫度區(qū)內,是“危險溫區(qū)”。

3.注意定期檢查液氮罐內液氮量,及時添加。

 

細胞的復蘇 

細胞復蘇的原則——快速融化:必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。

具體操作 

一、實驗前準備:

1.將水浴鍋預熱至37℃。

2.用75%酒精擦拭紫外線照射30min的超凈工作臺臺面。

3.在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)瓶等等。

二、取出凍存管:

1.根據(jù)細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的編號。

2.從液氮罐中取出細胞盒,取出所需的細胞,同時核對管外的編號。

三、迅速解凍:

1.迅速將凍存管投入到已經(jīng)預熱的水浴鍋中迅速解凍,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化。

2.約1~2min后凍存管內液體*溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內。

四、平衡離心:

用架盤天平平衡后,放入離心機中3000r/min離心3min。

五、制備細胞懸液:

1.吸棄上清液。

2.向離心管內加入10ml培養(yǎng)液,吹打制成細胞懸液。

六、細胞計數(shù):

細胞濃度以5×105/ml為宜。

七、培養(yǎng)細胞 

將復合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內,將培養(yǎng)瓶放入37℃和5%CO2的培養(yǎng)箱內2~4小時(或者24~48小時)后換液繼續(xù)培養(yǎng)培養(yǎng),換液的時間由細胞情況而定。

初學者易犯錯誤:

1.水浴鍋未預熱或者未預熱到37℃。

2.水浴鍋內凍存管太多,導致傳熱不佳,使融化時間延長。

3.離心前忘記平衡,導致離心機損壞和細胞丟失。

4.一次復蘇細胞過多,忘記更換吸頭和吸管,導致細胞交叉污染。

細胞計數(shù) 

實驗原理:當待測細胞懸液中細胞均勻分布時,通過測定一定體積懸液中的細胞的數(shù)目,即可換算出每毫升細胞懸液中細胞的細胞數(shù)目。

具體操作:

一、準備工作:

取一瓶傳代的細胞,按照《傳代細胞培養(yǎng)(消化法)》中的傳代方法繁殖細胞,待長成單層后以被使用。

二、細胞懸液制備:

細胞懸液的制備方法是用0.25%的*液消化、PBS液洗滌后,加入培養(yǎng)液(或Hanks液或PBS等*),吹打制成待測細胞懸液。

三、細胞計數(shù):

1.蓋好蓋玻片:取一套血球計數(shù)板,將特制的蓋玻片蓋在血球計數(shù)槽上。

2.制備計數(shù)用的細胞懸液:用吸管吸5滴細胞懸液到一離心管中,加入5滴臺盼藍染液(0.4%)或苯胺黑,活細胞不會被染色,加入染液后就可以在顯微鏡下區(qū)別活細胞和死細胞。

3.將細胞懸液滴入計數(shù)板:將待測細胞懸液吹均勻,然后吸取少量懸液沿蓋片邊緣緩緩滴入,要保證蓋片下充滿懸液,注意蓋片下不要有氣泡,也不能讓懸液流入旁邊槽中。

4.統(tǒng)計四個大格的細胞數(shù):將血球計數(shù)板放于顯微鏡的低倍鏡下觀察,并移動計數(shù)板,當看到鏡中出現(xiàn)計數(shù)方格后,數(shù)出四角的四個大鉻(每個大格含有16個中鉻)中沒有被染液染上色的細胞數(shù)目。

5.計算原細胞懸液的細胞數(shù):按照下面公式計算細胞密度:

(細胞懸液的細胞數(shù))/ml=(四個大格子細胞數(shù)/4)×2×10

說明:公式中除以4因為計數(shù)了4個大格的細胞數(shù)。

公式中乘以2因為細胞懸液于染液是1:1稀釋。 

公式中乘以104因為計數(shù)板中每一個大格的體積為:

1.0mm(長)×1.0mm(寬)×0.1mm(高)=0.1mm3,而1ml=1000mm3

四、細胞計數(shù)要點:

1.進行細胞計數(shù)時,要求懸液中細胞數(shù)目不低于104個/ml,如果細胞數(shù)目很少要進行離心再懸浮于少量培養(yǎng)液中。

2.要求細胞懸液中的細胞分散良好,否則影響計數(shù)準確性。

3.取樣計數(shù)前,應充分混勻細胞懸液,尤其時多次取樣計數(shù)時更要注意每次取樣都要混勻,以求計數(shù)準確。

4. 數(shù)細胞的原則是只數(shù)完整的細胞,若細胞聚集成團時,只按照一個細胞計算。如果細胞壓在格線上時,則只計上線,不計下線,只計右線,不計左線。

5. 操作時,注意蓋片下不能有氣泡,也不能讓懸液流入旁邊槽中,否則要重新計數(shù)。

五、初學者易犯的錯誤:

1. 計數(shù)前未將待測懸液吹打均勻。

2. 滴入細胞懸液時蓋玻片下出現(xiàn)氣泡。

3. 滴入懸液時的量太多,至使細胞懸液流入旁邊的槽中。

六、本實驗特殊試劑的配制:

4%臺盼藍母液:稱取4克臺盼藍,加入少量蒸餾水研磨,加雙蒸水至100毫升,用濾紙過濾,4℃保存。

使用液:使用時,用PBS稀釋母液至0.4%即可。

細胞的凍存 

1.先將凍存管放入4℃冰箱,約40min。

2.接著置于-20℃冰箱,約30~60min。

3.置于-80℃超低溫冰箱中放置過夜。

4.置于液氮罐中長期保存。

5同時做好凍存記錄,在自己的筆記本和凍存記錄本上均要記錄。

注意事項:

1.使用DMSO前,不需要進行高壓滅菌,它本身就有滅菌的作用。高壓滅菌反而會破壞它的分子結構,以至于降低冷凍保護效果。在常溫下,DMSO對人體有害,故在配制時戴上手套操作。 

2.不宜將凍存細胞放置在0℃~-60℃這一溫度范圍內過久,低溫損傷主要發(fā)生在這一溫度區(qū)內,是“危險溫區(qū)”。

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關鍵字:細胞培養(yǎng)常用設備及實驗技巧
 

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